在细胞抵御氧化应激(Oxidative Stress)与维持内环境还原稳态的网络中,谷胱甘肽还原酶(Glutathione Reductase, 简称 GR; EC 1.8.1.7) 占据着无可替代的“引擎”地位。GR 是一类依赖二核苷酸(FAD)的黄素二聚体氧化还原酶,催化氧化型谷胱甘肽(GSSG)还原为还原型谷胱甘肽(GSH),同时消耗一分子还原型辅酶 II(NADPH)。
细胞内的还原型谷胱甘肽(GSH)是清除活性氧(ROS)、过氧化氢(H2O2)及重金属毒素的主要非酶促抗氧化剂。当细胞受到氧化损伤时,GSH 被谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)转化为 GSSG;而 GR 则是将 GSSG“回收”并重新转化为 GSH 的唯一关键酶。因此,GR 活性直接决定了细胞内 GSH/GSSG 比例(细胞氧化还原状态的黄金指标) 的高低。基于 Abbkine亚科因 标准化实验规程,本文系统梳理了 CheKine™ 谷胱甘肽还原酶(GR)活性检测试剂盒(微量法)的实验全流程、样本准备规范及关键避坑指南。
一、 检测原理与 NADPH 消耗连续光谱法
微量法测定 GR 活性基于 GSSG 还原过程中消耗 NADPH 的紫外吸收速率监测:
二、 样本采集、前处理与保存规范
- 动植物组织与细胞样本:精确称取新鲜组织(如肝脏、红细胞、植物叶片约 0.1 g),加入预冷的提取液。置于冰水浴中进行匀浆或超声破碎(避免过热导致 GR 蛋白变性失活)。4℃、10,000 g 离心 10 分钟,小心吸取上清液,置于冰上待测。
- 血清与红细胞样本: 全血离心分离红细胞,用预冷生理盐水洗涤后,加入冷蒸馏水裂解红细胞,离心取上清测定(红细胞中含有极高活性的 GR)。
- 保存规范: 粗提液中的 GR 酶活相对稳定,但提取后仍建议置于冰上并在当天的 4-6 小时内完成下机测定;若需长期保存,可在 -80℃ 冻存,但应避免反复冻融。
三、 微量法加样与比色测定步骤
本试剂盒适配 紫外透光 96 孔板(UV Plate) 或石英比色皿,采用连续动力学比色法:
四、 关键避坑指南与常见问题排查
- 避坑点一:误用普通 PS 材质微孔板导致 340 nm 信号阻断 普通聚苯乙烯(PS)微孔板对 340 nm 近紫外光有极强的光吸收(初值通常 > 3.0)。必须使用专用抗紫外 96 孔板(UV-transparent Plate),否则仪器无法读取有效数据。
- 避坑点二:NADPH 试剂反复冻融变质失活 NADPH 极易吸潮且在酸性或光照条件下自发分解。NADPH 母液应避光小量分装冻存,避免反复冻融导致本底吸光度过低,影响反应线性范围。
- 避坑点三:内源性 NADPH 氧化酶高背景干预 某些代谢旺盛的组织样本含有较高的内源性 NADPH 氧化酶。若发现不加底物 GSSG 时 340 nm 吸光度依然快速下降,必须设置“不加 GSSG”的样本对照孔进行背景扣除。
- 避坑点四:加样混匀产生气泡 340 nm 紫外读取对气泡极度敏感,气泡会导致光线折射造成读数剧烈波动。加样后如发现气泡,可用微量针头点破后再下机检测。
五、 实验室安全与废弃物处理
本试剂盒各组分不含强腐蚀性或高毒性化学品,但涉及紫外光检测与酶学反应,操作时请穿戴标准实验服与防化手套。实验产生的离心管与反应废液按常规生物化学废弃物分类收集处置。
准确测定谷胱甘肽还原酶活性对于揭示细胞抗氧化防御机制、评估氧化应激损伤及药物毒理具有重要指导价值。依托 Abbkine亚科因 标准化的微量紫外连续检测体系,科研人员能够高效克服背景干扰,获取高重复性的精细动力学数据。
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